细胞活力检测有多种方法，如检测染料排除，ATP浓度变化，酶活性变化等。细胞检测有时需要进行细胞毒性的机制研究和/或设立内参对照，由此产生多重(multiplex) 分析需求，即对同一样品用多种分析方法检测，彼此检测机理不同，相互不干扰，如此可以进行相关对比，从而揭示细胞毒性的机制或排除系统差异。国外 CellTiter Fluor （CTF）类产品就是基于这样的原理设计的。本公司自行研发推出了同类的荧光细胞活力检测试剂盒（Fluorescent Cell Viability Assay Kit），性能上与国外品牌产品无明显差异。本产品是基于活细胞内的蛋白酶对多肽-荧光基团底物产物的降解，产生荧光信号。细胞膜完整性受损时，该蛋白酶就失去了对底物的降解活性，不会产生荧光信号。CTF-LTM与荧光素酶试剂盒检测原理不同，检测方法也不同，其检测灵敏度次于荧光素酶法，但是可以检测到更早期的轻微的细胞损害，两个检测相容性好，可以进行multiplex 检测。
产品特性：
1、性能
检测信号，Window，灵敏度与特异性与国外品牌同类产品类似。
2、相容性
与CTG等常用分析试剂相容，不形成相互影响。
3、特征
对细胞早期膜损伤更敏感。
4、便捷
“加入-混合—温育-检测"，整个实验步骤简单，易操作。
产品组成：
蛋白酶底物，缓冲液混合后灌装于 10 mL 或 100 mL 的棕色瓶中及 2 ml 管中，规格如下：

1、细胞准备：
（1）在 96 孔或 384 孔细胞培养板铺合适密度的待检测细胞。建议使用黑板（如与发光试剂联合使用，可选择白板）。
（2）准备待检化合物。将合适浓度的待检测化合物加到细胞板孔中。培养液中有机溶剂浓度保持在1～2%以下。设立未加化合物的对照组。根据项目需求继续培养合适的时间。
2、细胞活力检测：
（1）取出 CTF-LTM细胞活力检测试剂，CTF缓冲液wan全溶解后平衡至室温。CTF底物涡旋振荡使其che底混匀，瞬时离心收集CTF底物至管底 。
（2）配制CTF反应液：CTF底物为100x，根据用量用CTF缓冲液配成1x反应液，充分混匀。
（3）取出待测细胞培养板，每孔加入等体积的CTF反应液，例如100μl培养液加入100μl 1x CTF反应液 。
（4）低速振板20 秒混匀，避光37 ℃ 反应60min 后进行荧光检测 。不同细胞对CTF底物切割速度不同，最佳读板时间需根据细胞优化。最快可以在加入试剂30分钟后进行读板。一般在60分钟或更长时间后读板的结果信噪比更高。建议读板时间最长不超过3hr。
（5）在荧光读板仪上读取荧光信号，激发光Ex 380-400nm，发射光Em 505nm。
（6）根据需要，继续进行下游的多重分析，例如Caspases 3/7 细胞凋亡检测。

1、初次使用后建议将底物分装-20℃保存，每次新鲜配制反应液。
2、非经严格验证，不建议随意改变反应试剂用量。

-20℃及以下避光储存，有效期12个月。