一、实验材料（自备）
PBS 缓冲液（1×，pH~7.4）
0.4% Triton X-100（PBS 配制） 
0.1% Triton X-100（PBS 配制，其中含 5 mg/mL BSA）
4%多聚甲醛（PBS 配制）
免疫组化笔
脱蜡溶剂（石蜡切片样本）
石蜡切片处理相关试剂
抗荧光淬灭封片剂
ddH2O
二、实验设计
A.阳性对照：
DNase I 处理制备阳性对照载玻片。DNase I可以消化单链或双链DNA暴露3'-OH末端，人为造成细胞凋亡。每次实验做一次即可。（用来验证本次实验操作和试剂盒有无问题）
B.阴性对照：
使用不含TdT Enzyme的TUNEL Reaction Buffer，用ddH2O替代 TdT Enzyme。（主要是排除细胞自身凋亡、操作过程等原因导致的非特异性染色；以及调整拍摄曝光强度。）
C.实验处理组。
实验组按照说明书正常操作。
D.实验对照组。
实验组按照说明书正常操作。
三、实验步骤:
1、样本准备：
（1）对于贴壁细胞或细胞涂片
a. PBS 清洗 1 次。
注：如果担心细胞涂片的细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。
b. 固定：加入适量 4%多聚甲醛（PBS 配制），4°C固定 30 min。PBS 清洗 2 次。
c. 通透：加入适量0.4% Triton X-100（PBS配制），室温通透20 min。PBS清洗2次。
d.转步骤 2. TUNEL 反应。

（2）对于悬浮细胞或细胞悬液
a. 收集细胞（ 3-5×106个细胞），1000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。 
b. 固定：加入适量4%多聚甲醛（PBS配制）充分重悬细胞，4℃固定30 min。2000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。 
c. 通透：加入适量0.4% Triton X-100（PBS 配制），室温通透20 min。2000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。 
d. 转步骤2. TUNEL 反应。 

（3）石蜡组织切片
a. 将石蜡切片置于切片架上，放置于60℃烘箱中烤片60min。 
b. 脱蜡与水化：将切片样本依次放入二甲苯I（10 min）→ 二甲苯II（10 min）→ 100％乙醇I（5 min）→ 100％乙醇II（5 min）→ 95%乙醇（5 min）→ 90%乙醇（5 min）→ 80%乙醇（5 min）→ 70%乙醇（5 min）→ ddH2O冲洗5 min，冲洗2次。 
注：二甲苯有毒，易挥发，请在通风橱中进行此操作。 
c. 用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。 
注：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。 
d. 通透：按1: 50 的比例，将2 mg/mL的Proteinase K 溶液用PBS稀释至终浓度40 µg/mL，在每个样本上滴加100 µL，使溶液覆盖全部样本区域，37℃孵育30 min。 
注：Proteinase K 可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，Proteinase K 的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。 
e. 将切片样本浸入 1×PBS 漂洗三次，每次5 min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。 
注：这一步必须把Proteinase K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。 
f. 转步骤2. TUNEL 反应。 

（4）冰冻组织切片
a. 固定：取出冰冻切片，并回温至室温。将切片样本浸入4%多聚甲醛（PBS配制）中，室温固定30 min。将切片样本浸入 1×PBS 漂洗三次，每次10 min。 
注：若是担心甲醛清洗不干净，影响最终染色效果。可在甲醛固定完成后加入适量2 mg/mL 甘氨suan清洗 10 min，中和残留的固定液，再进行PBS清洗。 
b. 用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。 
注：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。 
c. 通透：按1:50的比例，将2 mg/mL的Proteinase K溶液用PBS稀释至终浓度40 µg/mL，在每个样本上滴加100 µL，使溶液覆盖全部样本区域，37℃孵育20 min。 
注：Proteinase K 可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，Proteinase K 的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。如优化Proteinase K的浓度与孵育时间仍无法改善染色效果，可选择将样本浸入1%Triton X-100（PBS 配制）中，室温促渗 3-5 min；之后将切片样本浸入 1×PBS 漂洗三次，每次 5 min。 
d. 将切片样本浸入 1×PBS 漂洗三次，每次5 min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。 

（5）阳性处理（仅阳性对照进行此步骤，其他样品直接进行 TUNEL 反应步骤）
a. 按1: 10的比例用ddH2O将10× DNase I Buffer 稀释成1× DNase I Buffer 备用。
b. 滴加100 µL 1× DNase I Buffer 到已处理的样本上，覆盖全部样本区域，室温平衡5 min。
c. 用1× DNase I Buffer 以 1: 100 稀释 DNase I (2 U/μL)至终浓度 20 U/mL的工作液。
d. 弃去Buffer，加入100 μL浓度为20 U/mL的 DNase I工作液，室温孵育15 min。
e. 弃去DNase I 工作液，PBS清洗2次。
f. 转步骤2. TUNEL 反应。
2、TUNEL 反应
（1）配制 TUNEL 反应液（即用即配）：

（2）对于贴壁细胞、细胞涂片或组织切片
a.每个样本加入 50 μL TUNEL 反应液，使反应液均匀覆盖样本。37℃避光孵育适宜的时间（细胞推荐染色时间 15-30min，组织染色时间推荐 1 h）。 
注：50 μL TUNEL 反应液适合涂片、切片或 96 孔板（其他不同孔板可以适当调整 TUNEL 反应液体积，覆盖细胞即可）。如果待检测的样品为涂片、切片或在 24 孔板、12 孔板或 6 孔板中，可以使用防蒸发膜，或自行尝试使用自封袋或者其它适当材料自行裁剪成比孔略小的圆形塑料片，滴加 TUNEL 反应液后覆盖在样品上，可以防止TUNEL 反应液蒸发，并且使TUNEL 反应液均匀覆盖样本。 
b. 弃去 TUNEL 反应液，PBS 清洗 2 次后，再用 0.1% Triton X-100（PBS 配制，其中含 5 mg/mL BSA）清洗 3 次，每次 5 min，这样游离的未反应的标记物可以清除较干净。 
c.（可选）每个样本加入适量浓度为 5 μg/mL 的 DAPI 染液，室温避光孵育 5 min。染色完成后，弃去 DAPI 染液，PBS 清洗2 次，每次 5 min。 
d.（可选）切片封片：每个样本滴加 20 μL 抗荧光淬灭封片剂（抗荧光淬灭封片剂可能会不适用于某些染料，实验前建议进行预实验测试匹配性），盖上盖玻片，用镊子的钝端轻轻敲击盖玻片，去除气泡以使封片wan全。
e. 用滤纸吸去多余的液体，向样本区域加 100 μL PBS 保持样本湿润，立即在荧光显微镜下观察。

（3）对于悬浮细胞或细胞悬液
a.每个样本管加入50 μL TUNEL反应液轻轻重悬细胞，37℃避光孵育15-30min。每隔10 min用微量移液器轻轻重悬细胞。
b. 2000 rpm 离心 5 min，弃去 TUNEL 反应液，用0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）清洗2次，每次 5 min，这样游离的未反应的标记物可以清除较干净。 
c. 每个样本管加入100 μL浓度为5 μg/mL的DAPI染液，室温避光孵育5 min。
d. 加入400 μL PBS重悬细胞，立即用流式细胞仪检测或进行涂片后在荧光显微镜下观察。

-20℃保存，组分 A 需避光，避免反复冻融。