1、应用于新鲜组织：
新鲜取材的组织标本迅速浸没于本产品中，固定液与组织比例不小于1:10，组织块不宜过厚，≤5 mm最佳，固定时间一般1-4 h/mm，或固定24 h即可进行后续操作，大标本可适当延长固定时间。
2、应用于组织切片
加入4%多聚甲醛固定液量以充分覆盖切片为准。通常室温固定10-20分钟即可完成固定，但切片较厚时可以固定较长时间，例如1-2小时。后续需使用适当的洗涤液充分洗涤以去除残留的多聚甲醛。
3、应用于细胞爬片：
去除培养液后，按照每六孔板一个孔加入1毫升固定液的比例，加入4%多聚甲醛固定液。体外培养的细胞爬片固定15 min以内。后续需使用适当的洗涤液充分洗涤以去除残留的多聚甲醛。
4、应用于流式：
收集细胞：收集细胞，1000rpm离心10min，弃上清
加入固定液：加入4℃预冷的PFA，通常建议的比例是至少每百万细胞使用1mL的固定液（根据实验调整比例）轻轻混匀，确保所有的细胞都被固定液包围。
固定：室温避光孵育15分钟至1小时，对于一些敏感的标记物来说，可能需要更短的时间来避免过度固定导致的损失。
洗涤：固定完成后，1000rpm离心10min，PBS洗涤细胞至少一次，以去除未结合的固定剂。
进一步处理：如果立即进行标记和其他实验处理，则可以继续进行。  

1、请在通风良好的环境下使用，并做好防护，避免吸入。
2、为确保固定液充分渗透组织，取材组织厚度不要超过5 mm，并确保固定液用量足够。如果容积不够大，可在固定期间更换2-3次固定液。
3、用完后请及时拧紧瓶盖，防止有效成分挥发。
4、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作