1.样本处理不当：污染风险高

错误：冻存样本解冻后直接操作，未清洗或消毒。

后果：细菌、真菌污染导致细胞失活。

解决方案：

解冻后用Hanks液清洗1-2次，再用纯双抗浸泡或吹打30秒-1分钟。

确保所有试剂和耗材无菌，操作在生物安全柜内进行。

2.消化酶选择错误：细胞活性差

错误：未根据组织类型选择特异性消化酶。

后果：细胞解离不充分或损伤严重。

解决方案：

上皮细胞：优先使用胰酶（0.25%），4℃过夜消化可提高效率。

纤维组织：胶原酶（0.1-0.3mg/mL）对细胞间质消化更温和。

联合使用：胰酶+胶原酶+透明质酸酶可提升复杂组织的分离效果。

3.消化时间过长：细胞死亡率高

错误：胰蛋白酶消化时间超过2小时，或胶原酶超过12小时。

后果：细胞膜破裂，活性丧失。

解决方案：

胰酶：37℃消化15-30分钟，每5分钟观察一次，细胞团块膨松后终止。

胶原酶：37℃消化1-4小时，根据组织硬度调整，避免频繁振荡导致机械损伤。

4.机械分散过度：细胞碎片多

错误：用吸管反复吹打或注射器强力压挤纤维组织。

后果：细胞机械损伤，碎片影响后续培养。

解决方案：

软组织：用吸管轻柔吹打5-10次。

纤维组织：剪碎后静置10分钟，让细胞自然脱落，减少吹打次数。

5.培养基使用不当：细胞生长受限

错误：培养基量不足、抗生素过量或使用过期培养基。

后果：细胞营养不足、代谢废物积累或毒性反应。

解决方案：

初始培养基量：覆盖组织块2-3mm，避免蒸发干涸。

抗生素：常规使用双抗（青霉素+链霉素），但避免浓度过高（≤1%）。

培养基选择：原代细胞专用培养基，避免使用血清替代物。

6.组织块排列过密：细胞爬出困难

错误：组织块间距＜5mm，或频繁移动培养瓶。

后果：细胞竞争营养，迁移受阻。

解决方案：

组织块大小：花生至黄豆大小（约5×5mm），厚度≥2mm。

排列密度：组织块间距≥1cm，避免重叠。

静止培养：前7天勿移动培养瓶，第7天补液时轻柔操作。

7.细胞纯度不足：杂细胞污染

错误：未采用差时贴壁法或专用培养基。

后果：成纤维细胞、巨噬细胞等杂细胞过度生长。

解决方案：

差时贴壁法：成纤维细胞1-2小时贴壁，神经细胞6-8小时贴壁，通过分步传代纯化。

专用培养基：使用低血清（2-5%）或无血清培养基，抑制杂细胞生长。

磁珠分选：针对特定细胞标记物进行阳性或阴性筛选。

8.离心参数错误：细胞损伤或回收率低

错误：离心速度＞1000r/min或时间＞10分钟。

后果：细胞挤压损伤或沉淀不充分。

解决方案：

离心条件：1000r/min，低速离心10分钟，悬液量大时可延长至15分钟。

洗涤步骤：用无钙镁PBS洗涤2次，培养基洗涤1次，避免细胞聚集。

9.细胞冻存与复苏不当：活性丧失

错误：反复冻融或冻存液含DMSO浓度过高。

后果：细胞冰晶损伤或化学毒性。

解决方案：

冻存液：含10%DMSO+90%FBS，分装后-80℃梯度降温。

复苏：37℃水浴快速解冻，立即转移至预温培养基中，次日换液去除DMSO。

避免复冻：原代细胞传代不超过5代，建议尽早使用。

10.忽视细胞状态监测：实验失败率高

错误：未定期观察细胞形态或活力检测。

后果：细胞老化、污染或分化未及时发现。

解决方案：

每日观察：倒置显微镜下检查细胞形态、贴壁率和增殖速度。

活力检测：台盼蓝染色排除死细胞，MTT法检测增殖能力。

污染排查：定期检测培养基pH值和浑浊度，疑似污染时立即处理。